【實驗原理】
如圖所示，親和層析的高度選擇性使得從某一初始材料中純化，富集某一含量較低的目的蛋白成為可能，因此親和層析是蛋白質分離純化過程中*有效的方法之一。另外，如果配基與蛋白質的親和能力很強，也可同時進行樣品的濃縮。
雖然多數情況下不需要將抗體與其他血清蛋白分開，但如果一旦需要，蛋白A親和層析是一種非常有效的分離方法。蛋白A是從Staphylococcusaureus中獲得，可與抗體重鏈的Fc片段相結合。現在已知蛋白A可與多種哺乳動物的IgG相結合也可與某些IgM和IgA相結合。如果將蛋白A與固相載體相連，例如sepharoseCL-4B，這種填料可以成為分離和純化不同類型，不同亞類抗體或抗體片斷的重要工具。
【實驗材料】
⒈.實驗儀器
蛋白A柱（含10ml或5ml填料）；泵；離心管；離心機；pH試紙；過濾器；玻璃柱。
⒉.實驗試劑
⑴ TBS緩沖溶液：6.06g Tris (50 mM), 8.78g NaCl (150mM)以及0.5g疊氮化鈉(0.05%)溶于1L蒸餾水中，并用HCl調節pH 7.4。
⑵ 中和緩沖溶液：121.2g Tris (1 M), 87.8g NaCl (1.5 M), 0.37g EDTA(1mM)及5g疊氮化鈉(0.5%)溶于1L蒸餾水中，并用HCl調節pH8.0。
⑶ 洗脫緩沖溶液(pH2.7)：將3.75g甘氨酸(50 mM)溶解于1L蒸餾水中，用HCl調節pH 2.7。
⑷ 洗脫緩沖溶液(pH1.9)：將3.75g甘氨酸(50 mM)溶解于1L蒸餾水中，用HCl調節pH 1.9。
【實驗方法】
⒈ 準備蛋白A sepharoseCL-4B親和柱
通常準備5ml或10 ml蛋白A sepharoseCL-4B填料，在真空瓶中將等體積的填料和TBS緩沖溶液混合，攪拌。抽真空約15分鐘以除去填料中的氣泡，否側在柱中形成的氣泡影響柱子的容量和分離效果。將蛋白Asepharose CL-4B填料緩慢加入玻璃柱中，利用泵控制填充速度為1 ml/分-2ml/分，避免柱干，利用10倍于床體積并經過預冷的TBS緩沖溶液平衡柱子。
⒉ 制備抗血清
將抗血清放入冰水或4oC冰箱中緩慢解凍以避免蛋白質的聚集。在蛋白質解凍過程中出現的聚集可通過37oC預熱而溶解。加入固體疊氮化鈉至濃度為0.05%，4oC，15,000xg離心5分鐘，移出澄清的抗血清再經過濾器過濾除去多余的脂。
⒊ 親和層析
將抗體用TBS緩沖溶液以1：5的比例進行稀釋，再用過濾器進行過濾。以每分鐘0.5ml的速度將抗血清上到柱上,為保證抗血清與填料的結合，需連續上柱2次并保留上樣流出液。用TBS緩沖溶液清洗柱子至Aλ280nm<0.008后加pH2.7洗脫緩沖溶液，以0.5ml/min的速度洗脫至所有蛋白均流下來。用已經加入100ul中和緩沖溶液的1.5mlEP管分管收集洗脫液，混勻后用pH試紙檢查洗脫液的pH，如果pH低于7可利用中和緩沖液調至約pH7.4以防止抗體的變性。
在柱中加入10ml，pH1.9洗脫緩沖溶液，按上述方法收集洗脫液至Aλ280nm<0.008。
利用分光光度計測定各管中蛋白質的含量。若蛋白濃度低于0.5mg/ml可加入10%的甘油以便保存，將純化的抗體分裝后在2oC~8oC保存。
用含0.05%疊氮化鈉的TBS緩沖溶液清洗柱子后將柱子儲存在2oC~8oC環境。
【實驗結果】
利用SDS/PAGE檢查洗脫獲得的蛋白純度并利用**電泳技術檢查純化后抗體的滴度。
【注意事項】
⒈ 疊氮化鈉有毒，應戴手套并小心操作
⒉在純化過程中，預冷的TBS緩沖溶液可減少蛋白質的非特異性結合和微生物的代謝。